重组羧肽酶B酶联*吸附测定试剂盒

重组羧肽酶B酶联*吸附测定试剂盒使用说明书 （96T）

 试剂盒用途 该试剂盒用于体外定量检测大肠菌液体中重组羧肽酶B含量。本试剂盒仅供研究或工业生产使用。 试剂盒基本参数 灵敏度 ＝1 ng/ml 检测范围：0.25?- 64ng/ml 特异性：可检测重组羧肽酶B，与其它重组大肠菌表达系统相关蛋白无明显交叉反应。 重复性：板内，板间变异系数均 < 10%。 工作时间：熟练实验人员可在2.5小时内完成一次测定。 有效期：6个月 试剂盒组成及保存 未拆封的试剂盒可在2-8℃保存一周。如果一周以后才使用试剂盒，请拆开试剂盒按照下表中的条件分别保存各组分。 

说明: 1、所有试剂瓶盖须旋紧以防止蒸发和微生物的污染。 2、酶标板-20℃可存放6个月，2-8℃存放勿**过一周。 试验所需自备物品 1.酶标仪（滤光片波长450 nm和650nm） 2.高精度移液器，EP管及一次性吸头，加样槽 3.37℃恒温箱，双蒸水或去离子水 4.洁净无纸屑的吸水纸或干布 待测样品注意事项 1.样品收集后若在1周内进行检测的可保存于2-8℃，若不能及时检测，请按一次使用量分装，冻存于-20℃（1个月内检测），或 -80℃（3个月内检测），避免反复冻融。 2.试剂盒检测范围不等同于样本的浓度范围，如果您的样品中检测物浓度**标准品值，请根据实际情况，做适当倍数稀释后再测。 3.若使用化学裂解液制备的样本或细胞提取液，由于引入某些化学物质会导致ELISA测值出现偏差。 检测前准备工作 1.?请提前20分钟从冰箱中取出试剂盒，平衡至室温，观察溶液是否有结晶，如果有结晶按提示进行操作。提前15分钟打开酶标仪预热。 2.稀释液配制 将浓缩标准品&样品稀释液&HRP-抗体稀释液用双蒸水稀释（1：25）。 3.洗涤液配制 将浓缩洗涤液用双蒸水稀释（1：25）。 提示:从冰箱中取出的浓缩洗涤液可能有结晶，属于正常现象，可用40℃水浴加热使结晶完全溶解后再配制洗涤液（加热温度不要**过50℃，使用时洗涤液温度应为室温）。请当日使用。 4.标准品配制 将标准品于1000转/分离心1分钟后，加入标准品&样品稀释液1.0 mL至冻干标准品中，旋紧管盖，静置10分钟，上下颠倒数次，待其充分溶解后，用移液器将其轻轻混匀（浓度为32ng/ml）, 然后进行倍比稀释（注：不要直接在反应孔中进行倍比稀释）。建议配制成以下浓度: ?32、 16、 8、 4、 2、 1、0.5、0?ng/ml。样品稀释液直接作为空白孔0 ng/ml。 提示：溶解和稀释标准品过程中尽量避免产生气泡。 倍比稀释方法 取7只EP管，每管中加入500 μL标准品&样品稀释液，从32ng/ml的标准品工作液中吸取500 μL加入含有500 μL标准品&样品稀释的EP管中混匀配成16ng/ml的标准品工作液，按此步骤往后依次吸取混匀。如下图。 标准品稀释图例（以500 μL为例） 提示：较后一管直接作为空白孔，不再加入标准品工作液。 5.HRP标记抗体工作液配制 实验前请先将抗体管1000转/分离心1分钟，以避免管壁及管盖上残留抗体。实验前计算实验所需用量（以100 μL /孔计算），实际配制时应多配制100-200 μL。使用前15分钟，用HRP-抗体稀释液将浓缩辣根过氧化物酶化抗体稀释为工作浓度（抗体：稀释液 = 1:125），当日使用。 6.显色底物（TMB）工作液配制 计算实验所需显色底物用量（以100 μL /孔计算），实际配制时应多配制100-200 μL显色底物工作液。使用前15分钟，用底物稀释液将TMB显色底物稀释为工作浓度（底物：稀释液 =1：20），避光保存，当日使用。 洗板方法 1.自动洗板机：每孔加入洗涤液350-400 μL（根据加满孔的标准进行调整）， 注入和吸出间隔60秒。 2.手工洗板： 甩尽孔内液体，在洁净无纸屑的吸水纸或干布上拍干，每孔加入洗涤液350-400 μL（根据加满孔的标准进行调整），浸泡2-3分钟，甩尽孔内液体，在洁净无纸屑的吸水纸上拍干。 操作步骤 1.将标准品工作液依次加入到前两列孔中，每个浓度的工作液并列加两孔（复孔），每孔100 μL。待测样品加入到其他孔，每孔100 μL，若样本浓度**检测范围，需用标准品&样本稀释液稀释后加样。将酶标板覆膜并置于37℃孵育60分钟。 提示：加样时将样品加于酶标板底部，尽量不触及孔壁，轻轻晃动酶标板混匀避免产生气泡。加样时间控制在10分钟内。 2.洗涤：甩尽孔内液体，在洁净无纸屑的吸水纸或干布上拍干。每孔加入350-400μL（根据加满孔的标准进行调整）洗涤液，浸泡2-3分钟，甩尽孔内液体，在洁净无纸屑的吸水纸或干布上拍干。重复此洗板步骤3次。 3.每孔中加入HRP-抗体工作液100 μL，轻轻晃动酶标板混匀避免产生气泡，将酶标板覆膜并置于37℃孵育30钟。 4.洗涤：用洗涤液洗板4次，方法步骤同2。 提示：酶标板洗涤不完全可能会造成标准曲线梯度差，或背景值高。应注意加入洗涤液的体积，以加满酶标板的孔为标准进行调整，确保所有的孔浸泡在洗涤液中并浸泡2-3分钟。 5.显色：每孔加底物显色工作液（TMB）100 μL，将酶标板覆膜并置于37℃条件下孵育10分钟。 提示: 加显色底物推荐使用排枪和加样槽，但应严格避免底物污染，确保所使用的加样槽洁净或一次性使用，加液时移液枪的枪头切不要接触孔内溶液以避免污染，影响实验结果。可通过观察加样槽中底物是否变蓝预判底物是否被污染。根据实际显况酌情缩短或延长，显色时间在5-30分钟范围内。当标准孔出现明显梯度时，即可终止。 6.终止：每孔加终止液50μL，终止反应，室温放置1分钟，推荐使用排枪和加样槽。 提示:?终止液的加入顺序应尽量与底物溶液的加入顺序相同。加液时移液枪枪头切不要接触孔内溶液以避免污染，影响实验结果。 7.读数：用酶标仪在450 nm波长（参考波长650nm）测量各孔的光密度（OD450/650 nm值）。 ?提示: 请提前打开酶标仪电源，预热仪器，设置检测程序。 结果判断 1.计算每组复孔的平均OD值。每个标准品的平均OD值减去空白孔的OD值作为矫正值。以标准品的浓度为横坐标（X），OD值为纵坐标（Y），绘出标准曲线（作图时亦可去掉空白组的值）。 2.推荐使用专业的曲线制作软件，如curve expert 1.3或ELISA Calc（请使用Logistic五参数拟合曲线计算方法绘制标准曲线）等。 3.若样品OD值**标准曲线上限，应适当稀释后重测。 4.典型数据 由于实验操作条件的不同（如操作者、移液技术、洗板技术和稳定条件等），标准曲线的OD值会有所差异。以下数据和曲线仅供参考，实验者需根据自己的实验建立标准曲线。 X-浓度（ng/mL） 32 16 8 4 2 1 0.5 0 Y-OD450/650nm 1.816 1.370 0.801 0.403 0.227 0.150 0.114 0.081 Y-OD450/650 nm（去本底） 1.735 1.289 0.720 0.322 0.146 0.069 0.033 0 回收量（ng/mL） 32.02 15.97 8.05 3.92 2.02 1.06 0.54 回收率% 100.1 99.8 100.6 98.0 101.0 106.0 108.0 注意事项 1储存：试剂盒中各种试剂请按说明书提示合理存放。在储存及温育过程中避免将试剂暴露在强光中。所有试剂瓶需旋紧以防止蒸发和微生物污染，否则可能会出现错误的结果。 2、酶标板：刚开启的酶标板孔中可能会有少许水样物质，此为正常现象，不会对实验结果造成任何影响。暂时不用板条应拆下后放入备用自封袋，按推荐温度存放。 3、加样：加样和加同一试剂时，孔与较后孔之间加样时间间隔过大将导致不同的“预温育”时间，从而明显的影响到测量值的准确性及重复性，每次的加样时间控制在10分钟之内。推荐设置复孔。 4、温育：为防止样品蒸发，实验时必须给酶标板覆膜，洗板后应尽快进行下步操作，避免酶标板处于干燥状态。严格遵守给定的温育时间和温度。 5、洗涤：洗涤过程中反应孔中残留的洗涤液应在吸水纸上拍干，勿将滤纸直接放入反应孔中吸水。在读数前要*酶标板底部残留的液体和手指印，以免影响酶标仪读数。 6、试剂配制：试剂盒在运输过程中会使液体沾到管壁或瓶盖，因此使用1000转/分离心一分钟，以使附着管壁或瓶盖的液体沉积到管底。取用前请用移液器小心吹打4-5次，使溶液混匀。所有试剂请按说明书指示请配制。 7、显色时间的控制：加入底物后，请定时观察反应孔的颜色变化（比如每隔五分钟），如梯度已经很明显，请提前加终止液终止反应，以避免颜色过深，影响酶标仪读数。 8、底物：请避光保存底物。在储存和温育时，避免强光直接照射。 9、混匀：充分轻微混匀对反应结果尤为重要，使用微量振荡器，使用频率，如无微量振荡器，可以在反应前手工轻轻敲击酶标板框混匀。 10、不同批号的试剂盒组分不能混用（洗涤液和终止液除外）。 11、关于样品回收率 1）本试剂盒以测定重组羧肽酶B的抗原性而非活力来推测残留量，因此试剂盒中标准品采用羧肽酶B的消光系数（E1%1cm=21.0D, 即当A280nm=2.10时，羧肽酶B浓度为1mg/ml）来计算其蛋白含量，以较大限度保持质控的和稳定性。 2）不同计量方法以及产品纯度的差别可以导致不同来源、不同批次产品中羧肽酶B的蛋白含量不完全一致，也会造成回收率的差异。 3）为避免上述因素影响，建议将用作回收率测试的样品采用分光光度法（A280nm）估算蛋白含量，再稀释至适合的浓度用于回收率测试，尽量减少回收率的误差。